至少對于某些理論學家來說，生命的最初形式就是RNA。生命可能源自自我復制的RNA分子，而分子生物學家卻長期將目光放在DNA上。但這一偏見確實有不錯的理由。DNA不僅被廣泛認為攜帶著生命指令的決定性拷貝，而且也更易于在實驗室操作。

　　如今，這兩個合理解釋都土崩瓦解了。基于非蛋白編碼部分RNA的一整層基因調控模式的發現，以及同期發展起來、操作這些分子的新工具和新技術，已經激起了人們對理解和探索RNA世界的濃厚興趣。在過去的幾年間，這一領域的創新包括了從解決簡單問題如制備今后分析所需的RNA保存制劑，到開拓全新的前沿如對單細胞中所有RNA轉錄本進行測序的方法。這種方法單刀直入，一些研究者甚至開始用它來代替轉錄本分析的芯片法。同時，為了提高可靠性，有些已經成型的技術也已得到徹底的革新，如利用小片段干擾RNA(short interfering RNA，siRNA)來進行基因沉默的技術。

　　解碼信息

　　研究RNA的基礎性進展始于2008年，當時研究者描繪的技術是測定一群細胞中的全部轉錄本。這種RNA-Seq的測序方法需要對純化過的信使RNA進行反轉錄，然后利用下一代測序工具來測定所有產生的cDNA。結果是細胞轉錄組的完全序列。

　　整個轉錄組的測序非常強大，然而最初版本的RNA-Seq也存在著一些限制�！�2009年，我們最初的RNA-Seq試劑盒需要至少一微克的RNA，而且需要高質量的(RNA)，否則你無法得到好結果�！蔽挥诩永�福尼亞州圣地亞哥市Illumina的杰出科學家Gary Schroth表示。

　　Illumina自此開始精煉步驟，現在提供的RNA測序試劑盒已可以使用少至100納克的RNA，這樣就使研究人員能夠測定小塊組織樣本中的轉錄組。該公司也提供去除核糖體RNA的試劑，核糖體RNA是困擾第一代RNA-Seq技術的主要污染物之一。

　　在一項被稱為Smart-Seq的技術演化中，研究者甚至可以設法測出單個細胞中的轉錄組。“如果在若干年前，一說到能夠做單細胞(RNA測序)，這種想法我會說‘不可能’，但當你有一個分離的、自由懸浮的細胞時，會發現實際上達到這種水平也并非難事�！盨chroth說。Smart-Seq對于粗雜的組織制備沒有作用，因此RNA-Seq仍然是研究這些樣品的最好方法。

　　隨著轉錄組測序持續發展，測序成本持續下降，很多生物學家現在開始使用RNA-Seq技術來進行常規轉錄組分析，這一工作以前留給RNA分析芯片來完成。芯片通過將RNA與短寡聚核苷酸組成的微陣列進行雜交，來確定存在哪些轉錄本。盡管這一方法多年來一直是轉錄組分析的主力軍，它卻只能夠鑒定出芯片制造者預測到的細胞可產生的RNA序列。由于 RNA-Seq技術的非偏倚性，它常常會顯示出可變剪切的RNA形式和全新的轉錄本，而這些在芯片中卻無法顯示，研究者可以就此對數據進行深入挖掘。 Schroth所在的公司可以制造這兩種分析類型的儀器，他聲稱，芯片在一些涉及大量樣本的研究中仍然具有優勢。

　　不管生物學家使用的轉錄分析策略如何，他們敏銳地意識到轉錄并不能確保一個基因產物的表達。尤其是RNA干擾(RNA interference，RNAi)系統產生的大量短的RNA片段能夠結合表達的轉錄本，并且靶向進行破壞。研究人員最初想通過對細胞中短片段RNA群體進行測序，并對不同序列的相對豐度進行定量，進而研究這一系統。這證明是比較棘手的。

　　“我們通過一些體外實驗發現，一些小RNA的細胞群體在測序文庫的呈現并沒有其他的好�！蔽挥隈R薩諸塞州伊普斯維奇的新英格蘭生物實驗室的資深科學家Brett Robb說。尤其是許多動物和植物細胞修飾了它們小RNA的3’末端，這樣，標準的測序方法將不足以展現出這些修飾過的分子。為了解決這一問題，Robb 和他的同事優化了一種基于連接反應的技術，該技術能在測序前將一個特定修飾過的DNA接頭連接到小RNA上。

　　當科學家繼續深入研究轉錄后基因調控時，他們發現了額外的RNA類型。Robb說：“在我們研究小RNA時，很多我們了解到的事情都將對一些新興事物有所助益，例如最近非�；鸬拈L非編碼RNA( long noncoding RNAs，lncRNAs)�！�

　　lncRNAs是超過200個核苷酸的RNA片段，它們不編碼蛋白質，但反倒以多種方式調控轉錄和翻譯。在大規模的測序計劃中，科學家估計人類基因組至少編碼數以萬計的lncRNAs，意味著這些分子代表了基因調控的另一主要層次。

　　lncRNAs是雙鏈的，可由基因組DNA的任意一條鏈進行編碼。這為早期的lncRNA研究者帶來了主要問題，他們經常難以找出某個lncRNA來源于哪條DNA鏈�，F在，NEB公司為此開發了一個名為NEBNext Ultra的試劑盒，生產鏈特異性的測序文庫。

　　沉默的片刻

　　除了測序并研究非編碼RNA之外，研究人員也在將其用于探究基因的功能。利用合成siRNA寡核苷酸瞬時阻斷目標蛋白的表達已成為標準的實驗室技術，藥物研發人員也開始繼續探索使用RNA干擾機制治療疾病的方式。

　　的確，基于RNA干擾的治療法與許多生物制藥產業所采用的技術遵循著同樣的循環。“當人們發現RNA干擾時，當然是十分興奮的，而后又會經歷跌宕起伏，然后RNA干擾又興起了�！蔽挥诩永�福尼亞州卡爾斯巴德的生命技術公司RNA干擾技術部高級產品經理Nitin Puri說。

　　最初能夠瞬時關閉任何基因表達的希望很快就被現實取代了，研究人員發現他們的合成siRNA分子常常靶向多個轉錄本，并且往往缺乏傳統藥物的效力。在最初的失望之后，該領域又開始逐漸恢復，研究人員開始解決其中的一些問題�！霸谶^去的兩到三年間，我們看到研究者已經(對siRNA)更有興趣，因為他們意識到該技術如何幫助他們真正洞察并理解高通量篩選�！盤uri說。

　　人們開始使用改進的寡核苷酸設計算法和化學標記，例如，生命技術公司現在能夠合成應對單個或多個基因的有效、特定siRNA。通過用這些新的siRNA進行高通量篩選，科學家可以快速縮小可能與特定表型相關的基因列表。

　　但即便是很好的高通量篩選還是會產生大量的誤差，通常會標記出許多與研究者研究表型不直接相關的基因。篩選數據的新策略可能會有所幫助。“我們與研發新方法的研究者合作，特別是生物信息學方法，來清除不必要的基因。”Puri說。

　　研究人員也學會了讓自己對siRNA的期望更加現實　�！澳切┦褂肦NA干擾并且在這一領域研究多年的科學家開始理解，并更加接受它的天然缺陷�！蔽挥隈R薩諸塞州沃爾瑟姆的賽默飛世爾公司高級產品經理Louise Baskin說，“機制本身就很混亂，我們盡力讓它變得更具體，但經常還是會有不可預料的事情發生�！�

　　即使一些針對重要基因產物的高特異性siRNA分子也無法產生表型，但生物學家早已清楚知道其中的原因�！爸饌�攻破基因的困擾之一在于我們的細胞非常聰明，它們具有次生通路和冗余的機制來拯救自己�！盉askin說。為了最大化siRNA篩選成功的幾率，她建議使用針對一個通路中多個基因靶點的一套siRNA，而非只用一個。賽默飛世爾公司提供預制的siRNA文庫來支持這一策略，這些文庫能夠靶向人類、大鼠或者小鼠中的任何已知基因，而且這家公司近期也新增了針對長非編碼RNA的siRNA文庫。

　　對于想要在原生細胞或整個組織中進行操作的研究者來說，僅僅讓siRNA分子接近靶標也會產生麻煩，因為這些細胞通常會抵抗傳統的轉化方法。為了解決這一問題，賽默飛世爾公司研發了一套自我遞送的siRNA系，攜帶的化學修飾會允許它們直接進入細胞。

　　快速敲除

　　合成的siRNA為瞬時調低基因表達提供了便捷的方式，而要找尋持久影響的研究人員則往往會轉向那些編碼短發卡RNA(short hairpin RNAs，shRNA)的DNA載體。轉化或轉染了這些載體之一的細胞在細胞核中轉錄了短發卡RNA，并在其中通過自身的RNA干擾機制去形成應對特異性轉錄本的siRNA。載體在細胞中持續存在，從而就能永久地沉默目標基因產物。

　　通過將靶向不同轉錄本的一組 shRNA混在一起，研究者能夠產出一群細胞，其中每個細胞都有一個不同基因被沉默。通過分離展現出所需表型的細胞，并對它們攜帶的載體進行測序，就能提供出可能參與到那個表型的快捷基因圖譜。這種混合池的方法極大地降低了高通量shRNA篩選的成本和復雜性�！安煌�于將一個shRNA放入一個細胞孔中觀測結果，你可以將許多甚至上千個shRNA一次性放入整板的細胞中，如果你的實驗計劃和執行夠仔細…你將能在更低的成本和更快的速度下迅速篩選出大量的基因�！蔽挥诿芴K里州圣路易斯市的西格瑪生命科學公司功能基因組細分市場經理Shawn Shafer說。

　　為了助力分析工作，布羅德研究所RNA干擾共同體的科學家已經制出了靶向15000個人類和15000個小鼠基因的shRNA文庫。這些shRNA被打包在能夠轉染大量細胞的慢病毒基因載體中。目前，西格瑪公司和賽默飛世爾公司都為研究者提供這樣的文庫�，F在，這一共同體正試著研制至少兩個高效、經過驗證的基于 RNA干擾抑制子，不僅針對每個人類和小鼠的基因，而且也針對長非編碼RNA。這些試劑將會讓高通量遺傳篩選更加容易。

　　隨著方法的提升，研究人員也開始揭開新的難題。近期關于RNA干擾機制的數據顯示，一個僅有7個核苷酸長度的小“種子序列”可能決定著小RNA的特異性。這將有助于解釋許多siRNA和shRNA抑制子含混不清的效應;一個七堿基的序列與22堿基序列相比，能夠潛在結合更多的轉錄本�！八麄兡壳八�做的混合池篩選需要兩個或三個對應同一轉錄本的shRNA作為采樣數，某種程度上可以充當最初采樣的重新驗證�！盨hafer說。

　　西格瑪公司也提供采用siRNA實驗相同方法的試劑盒。在該公司的EasyRNA方案中，實驗者可以擴增轉錄本的片段，并將它變成覆蓋整個片段的siRNA混合池。以定制的多重siRNA去靶向轉錄本可能會有助于在最小化脫靶影響的同時使沉默最大化。

　　為長期基因沉默設計高效的shRNA是一項更為艱巨的任務。最初，生物學家僅僅借用了他們用來設計合成siRNA的算法，并將其應用在shRNA載體上。這個效果并不明顯。“如果你放入一條(siRNA)序列，并試著在一個載體中表達它，你將在功能上得到大量的變異性。”位于阿拉巴馬州亨茨維爾的 TransOMIC公司高級產品經理Andy Crouse說。

　　同一序列在siRNA和shRNA間的性能差異可能來源于它們在細胞中差異頗大的通路。Crouse解釋道，當shRNA被轉錄并進入與自身RNA干擾系統相同的細胞機制時，合成的siRNA繞過了這一途徑的大部分，并直接與它們的靶標轉錄本相結合。

　　一段時間以來，圍繞這一問題，科學家簡單地通過使用多重shRNA載體針對每個想要沉默的轉錄本，希望其中一個或者組合起來能夠達到較好的效果。做混合池shRNA篩選的能力最終幫助研究者從一個大的分組中分離大部分有效的shRNA。分析有效的shRNA混池帶來了新的算法，能夠準確地預測沉默給定靶標最恰當的shRNA序列。TransOMIC公司現在使用這一算法設計shRNA的定制套系，同時也預建了靶向特定基因家族的shRNA文庫。

　　隨著非編碼RNA的研究技術不斷發展，該領域的專家也看到了RNA世界的美好未來。“人類的復雜性并不能通過我們比例較小的蛋白編碼基因來解釋……我們所擁有的復雜性存在于我們基因組中會轉錄為RNA、但永遠也不會產生蛋白的那部分比例中�！辟惸�飛世爾公司的Baskin說。她補充道：“我們如何進行研究，這對于我們對生物系統的理解意味著什么，這些問題實際上有無盡的可能性�！�